Ändra sökning
Avgränsa sökresultatet
1 - 13 av 13
RefereraExporteraLänk till träfflistan
Permanent länk
Referera
Referensformat
  • apa
  • ieee
  • modern-language-association-8th-edition
  • vancouver
  • Annat format
Fler format
Språk
  • de-DE
  • en-GB
  • en-US
  • fi-FI
  • nn-NO
  • nn-NB
  • sv-SE
  • Annat språk
Fler språk
Utmatningsformat
  • html
  • text
  • asciidoc
  • rtf
Träffar per sida
  • 5
  • 10
  • 20
  • 50
  • 100
  • 250
Sortering
  • Standard (Relevans)
  • Författare A-Ö
  • Författare Ö-A
  • Titel A-Ö
  • Titel Ö-A
  • Publikationstyp A-Ö
  • Publikationstyp Ö-A
  • Äldst först
  • Nyast först
  • Skapad (Äldst först)
  • Skapad (Nyast först)
  • Senast uppdaterad (Äldst först)
  • Senast uppdaterad (Nyast först)
  • Disputationsdatum (tidigaste först)
  • Disputationsdatum (senaste först)
  • Standard (Relevans)
  • Författare A-Ö
  • Författare Ö-A
  • Titel A-Ö
  • Titel Ö-A
  • Publikationstyp A-Ö
  • Publikationstyp Ö-A
  • Äldst först
  • Nyast först
  • Skapad (Äldst först)
  • Skapad (Nyast först)
  • Senast uppdaterad (Äldst först)
  • Senast uppdaterad (Nyast först)
  • Disputationsdatum (tidigaste först)
  • Disputationsdatum (senaste först)
Markera
Maxantalet träffar du kan exportera från sökgränssnittet är 250. Vid större uttag använd dig av utsökningar.
  • 1.
    Björk, S. M.
    et al.
    KTH, Centra, Science for Life Laboratory, SciLifeLab. KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi. Novo Nordisk Foundation Center for Biosustainability.
    Sjöström, S. L.
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi. Novo Nordisk Foundation Center for Biosustainability.
    Andersson-Svahn, Helene
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi. Novo Nordisk Foundation Center for Biosustainability.
    Jönsson, Håkan N.
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi. Novo Nordisk Foundation Center for Biosustainability.
    Tuning microfluidic cell culture conditions for droplet based screening by metabolite profiling2015Ingår i: MicroTAS 2015 - 19th International Conference on Miniaturized Systems for Chemistry and Life Sciences, Chemical and Biological Microsystems Society , 2015, s. 1377-1379Konferensbidrag (Refereegranskat)
    Abstract [en]

    We investigate the impact of droplet culture conditions on cell metabolic state by determining key metabolite concentrations in S. cerevisiae cultures in different microfluidic droplet culture formats. Control of culture conditions is critical for single cell screening in droplets, as cell metabolic state directly affects production yields in cell factories. Metabolite profiling provides a more nuanced estimate of cell state compared to proliferation studies alone. We show that the choice of droplet incubation format has an impact on cell proliferation and metabolite production. Furthermore, we engineered a new better oxygenated droplet incubation format, with retained droplet stability and size.

  • 2.
    Björk, Sara M.
    et al.
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi. KTH, Centra, Science for Life Laboratory, SciLifeLab. KTH, Skolan för kemi, bioteknologi och hälsa (CBH), Proteinvetenskap, Nanobioteknologi.
    Sjostrom, Staffan L.
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi. KTH, Centra, Science for Life Laboratory, SciLifeLab.
    Andersson-Svahn, Helene
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi. KTH, Centra, Science for Life Laboratory, SciLifeLab. KTH, Skolan för kemi, bioteknologi och hälsa (CBH), Proteinvetenskap, Nanobioteknologi.
    Jönsson, Håkan N.
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi. KTH, Centra, Science for Life Laboratory, SciLifeLab. KTH, Skolan för kemi, bioteknologi och hälsa (CBH), Proteinvetenskap, Nanobioteknologi.
    Metabolite profiling of microfluidic cell culture conditions for droplet based screening2015Ingår i: Biomicrofluidics, ISSN 1932-1058, E-ISSN 1932-1058, Vol. 9, nr 4, artikel-id 044128Artikel i tidskrift (Refereegranskat)
    Abstract [en]

    We investigate the impact of droplet culture conditions on cell metabolic state by determining key metabolite concentrations in S. cerevisiae cultures in different microfluidic droplet culture formats. Control of culture conditions is critical for single cell/clone screening in droplets, such as directed evolution of yeast, as cell metabolic state directly affects production yields from cell factories. Here, we analyze glucose, pyruvate, ethanol, and glycerol, central metabolites in yeast glucose dissimilation to establish culture formats for screening of respiring as well as fermenting yeast. Metabolite profiling provides a more nuanced estimate of cell state compared to proliferation studies alone. We show that the choice of droplet incubation format impacts cell proliferation and metabolite production. The standard syringe incubation of droplets exhibited metabolite profiles similar to oxygen limited cultures, whereas the metabolite profiles of cells cultured in the alternative wide tube droplet incubation format resemble those from aerobic culture. Furthermore, we demonstrate retained droplet stability and size in the new better oxygenated droplet incubation format.

  • 3.
    Björk, Sara
    et al.
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi. KTH, Centra, Science for Life Laboratory, SciLifeLab.
    Sjöström, Staffan L.
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi. KTH, Centra, Science for Life Laboratory, SciLifeLab.
    Andersson Svahn, Helene
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi. KTH, Centra, Science for Life Laboratory, SciLifeLab.
    Jönsson, Håkan N.
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi. KTH, Centra, Science for Life Laboratory, SciLifeLab.
    Controlling cell metabolic state in droplet microfluidicsManuskript (preprint) (Övrigt vetenskapligt)
  • 4.
    Hammar, Petter
    et al.
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi. KTH, Centra, Science for Life Laboratory, SciLifeLab.
    Angermayr, S. Andreas
    Sjöström, Staffan L.
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi. KTH, Centra, Science for Life Laboratory, SciLifeLab.
    van der Meer, Josefin
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi. KTH, Centra, Science for Life Laboratory, SciLifeLab.
    Hellingwerf, Klaas J.
    Hudson, Elton P.
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi.
    Jönsson, Håkan N.
    Novo Nordisk Foundation Center for Biosustainability.
    Single-cell screening of photosynthetic growth and lactate production by cyanobacteria2015Ingår i: Biotechnology for Biofuels, ISSN 1754-6834, E-ISSN 1754-6834, Vol. 8, artikel-id 193Artikel i tidskrift (Refereegranskat)
    Abstract [en]

    Background: Photosynthetic cyanobacteria are attractive for a range of biotechnological applications including biofuel production. However, due to slow growth, screening of mutant libraries using microtiter plates is not feasible. Results: We present a method for high-throughput, single-cell analysis and sorting of genetically engineered l-lactate-producing strains of Synechocystis sp. PCC6803. A microfluidic device is used to encapsulate single cells in picoliter droplets, assay the droplets for L-lactate production, and sort strains with high productivity. We demonstrate the separation of low- and high-producing reference strains, as well as enrichment of a more productive L-lactate-synthesizing population after UV-induced mutagenesis. The droplet platform also revealed population heterogeneity in photosynthetic growth and lactate production, as well as the presence of metabolically stalled cells. Conclusions: The workflow will facilitate metabolic engineering and directed evolution studies and will be useful in studies of cyanobacteria biochemistry and physiology.

  • 5.
    Hammar, Petter
    et al.
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi. KTH, Centra, Science for Life Laboratory, SciLifeLab.
    Sjöström, Staffan L.
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi. KTH, Centra, Science for Life Laboratory, SciLifeLab.
    Angermayr, Andreas
    Hellingwerf, Klaas J.
    Hudson, Paul
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi. KTH, Centra, Science for Life Laboratory, SciLifeLab.
    Jönsson, Håkan N.
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi. KTH, Centra, Science for Life Laboratory, SciLifeLab.
    Single-cell screening of secreted lactate production in cyanobacteriaManuskript (preprint) (Övrigt vetenskapligt)
  • 6. Huang, Mingtao
    et al.
    Bai, Yunpeng
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi. KTH, Centra, Science for Life Laboratory, SciLifeLab. East China University of Science and Technology, China.
    Sjöström, Staffan L.
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi. KTH, Centra, Science for Life Laboratory, SciLifeLab.
    Hallström, Björn M.
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi. KTH, Centra, Science for Life Laboratory, SciLifeLab.
    Liu, Zihe
    Petranovic, Dina
    Uhlén, Mathias
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi. KTH, Centra, Science for Life Laboratory, SciLifeLab. Technical University of Denmark, Denmark .
    Jönsson, Håkan N.
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi. KTH, Centra, Science for Life Laboratory, SciLifeLab.
    Andersson Svahn, Helene
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi. KTH, Centra, Science for Life Laboratory, SciLifeLab.
    Nielsen, Jens
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi. KTH, Centra, Science for Life Laboratory, SciLifeLab. Chalmers University of Technology, Sweden; Technical University of Denmark, Denmark.
    Microfluidic screening and whole-genome sequencing identifies mutations associated with improved protein secretion by yeast2015Ingår i: Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, ISSN 0027-8424, E-ISSN 1091-6490, Vol. 112, nr 34, s. E4689-E4696Artikel i tidskrift (Övrigt vetenskapligt)
    Abstract [en]

    There is an increasing demand for biotech-based production of recombinant proteins for use as pharmaceuticals in the food and feed industry and in industrial applications. Yeast Saccharomyces cerevisiae is among preferred cell factories for recombinant protein production, and there is increasing interest in improving its protein secretion capacity. Due to the complexity of the secretory machinery in eukaryotic cells, it is difficult to apply rational engineering for construction of improved strains. Here we used highthroughput microfluidics for the screening of yeast libraries, generated by UV mutagenesis. Several screening and sorting rounds resulted in the selection of eight yeast clones with significantly improved secretion of recombinant α-amylase. Efficient secretion was genetically stable in the selected clones. We performed wholegenome sequencing of the eight clones and identified 330 mutations in total. Gene ontology analysis of mutated genes revealed many biological processes, including some that have not been identified before in the context of protein secretion. Mutated genes identified in this study can be potentially used for reverse metabolic engineering, with the objective to construct efficient cell factories for protein secretion. The combined use of microfluidics screening and whole-genome sequencing to map the mutations associated with the improved phenotype can easily be adapted for other products and cell types to identify novel engineering targets, and this approach could broadly facilitate design of novel cell factories.

  • 7.
    Jönsson, Håkan
    et al.
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Nanobioteknologi (stängd 20130101).
    Zhang, Chi
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Nanobioteknologi (stängd 20130101).
    Sjöström, Staffan
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Nanobioteknologi (stängd 20130101).
    Andersson-Svahn, Helene
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Nanobioteknologi (stängd 20130101).
    Microfluidic droplet based enzyme variant screening: Towards improved enzymes for industrial applications2011Ingår i: 15th International Conference on Miniaturized Systems for Chemistry and Life Sciences 2011, MicroTAS 2011, 2011, s. 179-181Konferensbidrag (Refereegranskat)
    Abstract [en]

    We present a microdroplet based assay for selection of efficient variants of bacterially produced amylase enzyme to improve these enzymes for industrial applications. Fluorescent analysis of α-amylase in droplets at relevant concentrations demonstrates the discrimination of wild type α-amylase at stressed and non-stressed conditions. Dielectrophoretic sorting enables enrichment of target droplets from 48% to 98.1%. Finally the viability and proliferation of Bacillus Subtilis in droplets is demonstrated. This demonstrates an enzyme analysis and screening assay in the microfluidic droplets format for selection of an industrially relevant enzyme and a basis for further enzyme selections where fluorogenic substrates are available.

  • 8.
    Sjöström, Staffan
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi.
    Droplet microfluidics for directed evolution of biocatalysts2015Doktorsavhandling, sammanläggning (Övrigt vetenskapligt)
    Abstract [sv]

    Biokatalysatorer, dvs. katalysatorer av biologiskt ursprung, är viktiga inom en mängd olika industrier. För att förbättra biokatalysatorer används vanligtvis riktad evolution. En biokatalysator muteras för att skapa diversifierade varianter, vilka sedan kan screenas på funktion för att välja ut förbättrade varianter i ett iterativt arbetsflöde.

    Droppmikrofluidik är en ny teknik som kan användas för höghastighetsscreening. Tekniken innebär att objekt såsom enskilda celler kan inkapslas i droppar med pikoliter volymer i hastigheter över 1000 celler per sekund. Varje droppe fungerar som ett reaktionskärl, analogt till en mikrobrunn, där en enskild klon kan screenas.

    I denna avhandling redovisas studier om användning av droppmikrofluidik för riktad evolution av biokatalysatorer. I Paper I presenteras en multiplex droppmikrofluidisk metod för att karakterisera enzymvarianter. Metoden valideras genom att mäta kinetiken av β-galactosidase under inhibition av IPTG.  Paper II-III behandlar en metod för riktad evolution av celler med förbättrad produktion av industriellt viktiga enzymer. Två rundor av riktad evolution utfördes och förbättrade stammar kunde isoleras. Stammarna hade upp till 6 gånger högre enzymuttryck och hel genomsekvensering avslöjade fler än 300 mutationer. Många av dessa mutationer var i gener involverade i cellens maskineri för proteinsekretion. I Paper IV presenteras en metod för riktad evolution av enzymvarianter i miljöer som är dödliga för värdceller. Metoden användes för att screena efter förbättrade α-amylase varianter vid pH4. Paper V redovisar en metod för att screena cyanobakterier efter produktion av kemikalier. Vi visar att metoden kan användas för att anrika en stam som producerar mycket L-lactat. I Paper VI studeras metabolismen hos jästceller som är inkapslade i mikrofluidiska droppar. Cell metabolismen påverkades kraftigt av vilket inkubationskärl som användes för förvaring av emulsionen.

    Sammanfattningsvis är droppmikrofluidik en lovande teknologi för riktad evolution av biokatalysatorer i och med att den ger avsevärt förbättrad screeninghastighet och lägre kostnader. Teknologin skulle kunna underlätta utvecklingen av ändamålsspecifika biokatalysatorer som potentiellt kan ersätta miljöförstörande processer med hållbar grön kemi.

  • 9.
    Sjöström, Staffan
    et al.
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi.
    Huang, Mingtao
    Nielsen, Jens
    KTH, Centra, Science for Life Laboratory, SciLifeLab. KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi.
    Jönsson, Håkan
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi.
    Andersson Svahn, Helene
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi.
    Micro-droplet based directed evolution outperforms conventional laboratory evolution2014Ingår i: 18th International Conference on Miniaturized Systems for Chemistry and Life Sciences, MicroTAS 2014, Chemical and Biological Microsystems Society , 2014, s. 169-171Konferensbidrag (Refereegranskat)
    Abstract [en]

    We present droplet adaptive laboratory evolution (DrALE), a directed evolution method used to improve industrial enzyme producing microorganisms for e.g. feedstock digestion. DrALE is based linking a desired phenotype to growth rate allowing only desired cells to proliferate. Single cells are confined in microfluidic droplets to prevent the phenotype, e.g. secreted enzymes, from leaking between cells. The method was benchmarked against and found to significantly outperform conventional adaptive laboratory evolution (ALE) in enriching enzyme producing cells. It was furthermore applied to enrich a whole-genome mutated library of yeast cells for α-amylase activity.

  • 10.
    Sjöström, Staffan L.
    et al.
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi. KTH, Centra, Science for Life Laboratory, SciLifeLab.
    Bai, Yunpeng
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi. KTH, Centra, Science for Life Laboratory, SciLifeLab.
    Huang, Mingtao
    Liu, Zihe
    Nielsen, Jens
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi. KTH, Centra, Science for Life Laboratory, SciLifeLab.
    Jönsson, Håkan N.
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi. KTH, Centra, Science for Life Laboratory, SciLifeLab.
    Andersson Svahn, Helene
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi. KTH, Centra, Science for Life Laboratory, SciLifeLab.
    High-throughput screening for industrial enzyme production hosts by droplet microfluidics2014Ingår i: Lab on a Chip, ISSN 1473-0197, E-ISSN 1473-0189, Vol. 14, nr 4, s. 806-813Artikel i tidskrift (Refereegranskat)
    Abstract [en]

    A high-throughput method for single cell screening by microfluidic droplet sorting is applied to a whole-genome mutated yeast cell library yielding improved production hosts of secreted industrial enzymes. The sorting method is validated by enriching a yeast strain 14 times based on its a-amylase production, close to the theoretical maximum enrichment. Furthermore, a 105 member yeast cell library is screened yielding a clone with a more than 2-fold increase in a-amylase production. The increase in enzyme production results from an improvement of the cellular functions of the production host in contrast to previous droplet-based directed evolution that has focused on improving enzyme protein structure. In the workflow presented, enzyme producing single cells are encapsulated in 20 pL droplets with a fluorogenic reporter substrate. The coupling of a desired phenotype (secreted enzyme concentration) with the genotype (contained in the cell) inside a droplet enables selection of single cells with improved enzyme production capacity by droplet sorting. The platform has a throughput over 300 times higher than that of the current industry standard, an automated microtiter plate screening system. At the same time, reagent consumption for a screening experiment is decreased a million fold, greatly reducing the costs of evolutionary engineering of production strains.

  • 11.
    Sjöström, Staffan L.
    et al.
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Nanobioteknologi (stängd 20130101). KTH, Centra, Science for Life Laboratory, SciLifeLab.
    Jönsson, Håkan N.
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Nanobioteknologi (stängd 20130101). KTH, Centra, Science for Life Laboratory, SciLifeLab.
    Andersson Svahn, Helene
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Nanobioteknologi (stängd 20130101). KTH, Centra, Science for Life Laboratory, SciLifeLab.
    Multiplex analysis of enzyme kinetics and inhibition by droplet microfluidics using picoinjectors2013Ingår i: Lab on a Chip, ISSN 1473-0197, E-ISSN 1473-0189, Vol. 13, nr 9, s. 1754-1761Artikel i tidskrift (Refereegranskat)
    Abstract [en]

    Enzyme kinetics and inhibition is important for a wide range of disciplines including pharmacology, medicine and industrial bioprocess technology. We present a novel microdroplet-based device for extensive characterization of the reaction kinetics of enzyme substrate inhibitor systems in a single experiment utilizing an integrated droplet picoinjector for bioanalysis. This device enables the scanning of multiple fluorescently-barcoded inhibitor concentrations and substrate conditions in a single, highly time-resolved experiment yielding the Michaelis constant (K-m), the turnover number (k(cat)) and the enzyme inhibitor dissociation constants (k(i), k(i)'). Using this device we determine K-m and k(cat) for beta-galactosidase and the fluorogenic substrate Resorufin beta-D-galactopyranoside (RBG) to be 442 mu M and 1070 s(-1), respectively. Furthermore, we examine the inhibitory effects of isopropyl-beta-D-thiogalactopyranoside (IPTG) on beta-galactosidase. This system has a number of potential applications, for example it could be used to screen inhibitors to pharmaceutically relevant enzymes and to characterize engineered enzyme variants for biofuels production, in both cases acquiring detailed information about the enzyme catalysis and enzyme inhibitor interaction at high throughput and low cost.

  • 12.
    Sjöström, Staffan L.
    et al.
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi. KTH, Centra, Science for Life Laboratory, SciLifeLab.
    Jönsson, Håkan N.
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi. KTH, Centra, Science for Life Laboratory, SciLifeLab.
    Andersson Svahn, Helene
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi. KTH, Centra, Science for Life Laboratory, SciLifeLab.
    High-­throughput screening for improved enzymes in environments lethal to host cellsManuskript (preprint) (Övrigt vetenskapligt)
  • 13.
    Sjöström, Staffan L.
    et al.
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi.
    Jönsson, Håkan N.
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi.
    Svahn, Helene Andersson
    KTH, Skolan för bioteknologi (BIO), Proteomik och nanobioteknologi.
    Multiplex analysis of enzyme kinetics and inhibition by droplet microfluidics using picoinjectors2012Ingår i: Proceedings of the 16th International Conference on Miniaturized Systems for Chemistry and Life Sciences, MicroTAS 2012, 2012, s. 172-174Konferensbidrag (Refereegranskat)
    Abstract [en]

    We present a novel microdroplet-based device for extensive characterization of the reaction kinetics of enzymeinhibitor systems in a single experiment, for the first time utilizing droplet picoinjectors for bioanalysis. This device enables the scanning of multiple inhibitors, inhibitor concentrations and substrate conditions in a single, highly time resolved experiment yielding the Michaelis constant (Km), the turnover number (Kcat) the mode of inhibition and the inhibitor enzyme binding constants (Ki, Ki). Using this device we determine Km and Kcat for β-galactosidase and the fluorogenic substrate Resorufin β-D-galactopyranoside (RBG) to 252 μM and 477 s-1, respectively. Furthermore, we examine the inhibitory effects of Phenylethyl β-D-thiogalactopyranoside (PETG) on this system.

1 - 13 av 13
RefereraExporteraLänk till träfflistan
Permanent länk
Referera
Referensformat
  • apa
  • ieee
  • modern-language-association-8th-edition
  • vancouver
  • Annat format
Fler format
Språk
  • de-DE
  • en-GB
  • en-US
  • fi-FI
  • nn-NO
  • nn-NB
  • sv-SE
  • Annat språk
Fler språk
Utmatningsformat
  • html
  • text
  • asciidoc
  • rtf