kth.sePublikationer KTH
Ändra sökning
RefereraExporteraLänk till posten
Permanent länk

Direktlänk
Referera
Referensformat
  • apa
  • ieee
  • modern-language-association-8th-edition
  • vancouver
  • Annat format
Fler format
Språk
  • de-DE
  • en-GB
  • en-US
  • fi-FI
  • nn-NO
  • nn-NB
  • sv-SE
  • Annat språk
Fler språk
Utmatningsformat
  • html
  • text
  • asciidoc
  • rtf
Spatial Regulation of T-Cell Signaling by Programmed Death-Ligand 1 on Wireframe DNA Origami Flat Sheets
Karolinska Inst, Dept Med Biochem & Biophys, S-17165 Stockholm, Sweden..
KTH, Skolan för teknikvetenskap (SCI), Tillämpad fysik, Biofysik. KTH Royal Inst Technol, Dept Appl Phys & Sci Life Lab, S-10044 Stockholm, Sweden..ORCID-id: 0000-0002-3554-9322
Karolinska Inst, Dept Med Biochem & Biophys, S-17165 Stockholm, Sweden..ORCID-id: 0000-0002-8720-5011
Karolinska Inst, Dept Med Biochem & Biophys, S-17165 Stockholm, Sweden..
Visa övriga samt affilieringar
2021 (Engelska)Ingår i: ACS Nano, ISSN 1936-0851, E-ISSN 1936-086X, Vol. 15, nr 2, s. 3441-3452Artikel i tidskrift (Refereegranskat) Published
Abstract [en]

Programmed Death-1 (PD-1) is a coinhibitory receptor expressed on activated T cells that suppresses T-cell signaling and effector functions. It has been previously shown that binding to its ligand PD-L1 induces a spatial reorganization of PD-1 receptors into microclusters on the cell membrane. However, the roles of the spatial organization of PD-L1 on PD-1 clustering and T-cell signaling have not been elucidated. Here, we used DNA origami flat sheets to display PD-L1 ligands at defined nanoscale distances and investigated their ability to inhibit T-cell activation in vitro. We found that DNA origami flat sheets modified with CD3 and CD28 activating antibodies (FS-alpha-CD3-CD28) induced robust T-cell activation. Co-treatment with flat sheets presenting PD-L1 ligands separated by similar to 200 nm (FS-PD-L1-200), but not 13 nm (FS-PD-L1-13) or 40 nm (FS-PD-L1-40), caused an inhibition of T-cell signaling, which increased with increasing molar ratio of FS-PD-L1-200 to FS-alpha-CD3-CD28. Furthermore, FS-PD-L1-200 induced the formation of smaller PD-1 nanoclusters and caused a larger reduction in IL-2 expression compared to FS-PD-L1-13. Together, these findings suggest that the spatial organization of PD-L1 determines its ability to regulate T-cell signaling and may guide the development of future nanomedicine-based immunomodulatory therapies.

Ort, förlag, år, upplaga, sidor
AMER CHEMICAL SOC , 2021. Vol. 15, nr 2, s. 3441-3452
Nyckelord [en]
DNA nanotechnology, DNA origami, PD-1 receptor, cancer immunotherapy, nanoscale spatial distribution
Nationell ämneskategori
Cancer och onkologi
Identifikatorer
URN: urn:nbn:se:kth:diva-292497DOI: 10.1021/acsnano.0c10632ISI: 000623061800122PubMedID: 33556239Scopus ID: 2-s2.0-85101565349OAI: oai:DiVA.org:kth-292497DiVA, id: diva2:1543434
Anmärkning

QC 20210412

Tillgänglig från: 2021-04-12 Skapad: 2021-04-12 Senast uppdaterad: 2022-06-25Bibliografiskt granskad
Ingår i avhandling
1. Automating STED microscopy for functional and structural live-cell imaging
Öppna denna publikation i ny flik eller fönster >>Automating STED microscopy for functional and structural live-cell imaging
2021 (Engelska)Doktorsavhandling, sammanläggning (Övrigt vetenskapligt)
Abstract [en]

Optical microscopy imaging methods are today invaluable tools for studies in life sciences as they allow visualization of biological systems, tissues, cells, and sub-cellular compartments from millimetres down to nanometres. The invention and development of nanoscopy in the past 20 years has pushed fluorescence microscopy down to the nanoscale, reaching beyond the natural diffraction limit of light that does not allow focusing of visible light below sizes of around 200 nm, and into the realm of what was previously only thought possible with electron microscopy. The superior spatial resolution does however come at a price, including complex sample preparation, prolonged recording times, increased illumination doses, and limited fields of view. Stimulated emission depletion (STED) microscopy is one of the techniques that can deliver nanoscale resolution in a range of biological systems, but with all the above-mentioned costs. However, with the right sample the technique can deliver single nanometre spatial resolution, and with the right considerations live-cell imaging is more than possible.

In this thesis I present the development of a flexible STED microscope with methodological advancements in a range of directions that aim at facilitating the use of STED microscopy in life sciences and optimising the information extraction from the image data. The developments firstly focused on automation of the data acquisition, to allow the recording of imaging data both with a higher throughput and correlated with fast dynamic processes. I also implemented improved image analysis, both in terms of high throughput and precision as well as in connection with the data acquisition. Furthermore, I worked on control software development, with novel strategies to unify the control software of microscopes and to allow development and implementation of novel acquisition schemes. I also utilized novel fluorophores, to improve live-cell and multicolour possibilities and allow a wider range of applications in STED microscopy. Lastly, I developed a novel concept that takes advantage of STED. Additionally, I present applications of the microscope and image analysis in diverse biological samples such as mammalian cells, tissue sections, and bacteria. Altogether, this work aims at presenting new tools for an imaging technique that is already well-established, to contribute to further development, facilitation of novel experiments, and expansion of the range of applications.

Abstract [sv]

Ljusmikroskopi är idag ovärdeligt för forskare inom livsvetenskap för att visualisera och studera biologiska system, vävnader, celler, och beståndsdelar av celler på längdskalor från millimeter ner till nanometer. Uppfinnandet av nanoskopi och dess utveckling de senaste decennenierna har möjliggjort för fluorescensmikroskopi att nå den undre gränsen som tidigare var inom räckhåll endast med elektonmikroskopi. Anledningen till detta är diffraktionsgränsen som dikterar hur väl man kan fokusera elektromagnetisk strålning, och som i praktiken inte tillåter fokusering av synligt ljus till områden mindre än 200 nm i diameter. Nanoskopins överlägsna upplösning kommer däremot inte gratis, utan komplicerad förberedning av prover, förlängda inspelningstider, högre belysningsintensiteter, och begränsade synfält är några av de extra svårigheter som man måste ta hänsyn till. Stimulated emission depletion (STED) mikroskopi är en av dessa metoder som kan avbilda prover från biologiska system med nanometerupplösning, men med alla svårigheter som nämnts ovan. Men med rätt prov så kan metoden leverera en upplösning under 10 nm, och med rätt hänsyn tagen till cellöverlevnad så kan levande celler avbildas. 

I denna avhandling presenterar jag utvecklingen av ett STED-mikroskop med en rad tekniska framsteg som fokuserar på att underlätta användningen av STED-mikroskopi i livsvetenskap och optimera utvinningen av information från bilderna. Utvecklingen har fokuserat på automatisering, med möjligheten att samla in bilddata med både högre genomströmning och i samband med snabba processer i de biologiska systemen, men också förbättrad bildanalys både i form av högre genomströmning och precision samt i samband med datainsamlingen. Jag har också utvecklat kontrollmjukvara med nya strategier för att tillåta fortsatt utveckling och implementering av nya datainsamlingssätt för liknande mikroskop. Dessutom har jag utnyttjat nya fluorescenta molekyler för att förbättra möjligheten att använda tekniken i levande celler och med fler inspelningskanaler samt tillåta fler tillämpningssområden. Slutligen har jag utvecklat ett nytt koncept som tar hjälp av STED, och tillämpat mikroskopet och bildanalys på diverse biologiska system såsom däggdjursceller, vävnader och bakterier. Sammantaget siktar mitt arbete på att presentera nya verktyg för en redan etablerad mikroskopiteknik, för att bidra till fortsatt utveckling, underlätta nya typer av experiment och utöka bredden av tillämpningsområden. 

Ort, förlag, år, upplaga, sidor
Stockholm: KTH Royal Institute of Technology, 2021. s. 105
Serie
TRITA-SCI-FOU ; 2021:52
Nyckelord
STED, microscopy, nanoscopy, super-resolution microscopy, automation, image analysis, fluorophores
Nationell ämneskategori
Biofysik
Forskningsämne
Biologisk fysik
Identifikatorer
urn:nbn:se:kth:diva-305055 (URN)978-91-8040-084-8 (ISBN)
Disputation
2021-12-17, Sal Petrén, Wargentinhuset https://kth-se.zoom.us/j/62958723396, Nobels väg 12B, Solna, 13:00 (Engelska)
Opponent
Handledare
Tillgänglig från: 2021-11-19 Skapad: 2021-11-19 Senast uppdaterad: 2025-02-20Bibliografiskt granskad

Open Access i DiVA

Fulltext saknas i DiVA

Övriga länkar

Förlagets fulltextPubMedScopus

Person

Alvelid, JonatanTesta, Ilaria

Sök vidare i DiVA

Av författaren/redaktören
Alvelid, JonatanSpratt, JoelTesta, IlariaTeixeira, Ana, I
Av organisationen
BiofysikTillämpad fysikScience for Life Laboratory, SciLifeLab
I samma tidskrift
ACS Nano
Cancer och onkologi

Sök vidare utanför DiVA

GoogleGoogle Scholar

doi
pubmed
urn-nbn

Altmetricpoäng

doi
pubmed
urn-nbn
Totalt: 202 träffar
RefereraExporteraLänk till posten
Permanent länk

Direktlänk
Referera
Referensformat
  • apa
  • ieee
  • modern-language-association-8th-edition
  • vancouver
  • Annat format
Fler format
Språk
  • de-DE
  • en-GB
  • en-US
  • fi-FI
  • nn-NO
  • nn-NB
  • sv-SE
  • Annat språk
Fler språk
Utmatningsformat
  • html
  • text
  • asciidoc
  • rtf