Soft x-ray microscopy within the water window is a powerful technique for high-resolution biological imaging due to its capability to image whole, intact cells (approximately 10 μm thick) in their near-native cellular environment. The short wavelength of water-window radiation (λ = 2.3 − 4.4 nm, E = 284−540 eV) used in this imaging technique provides high natural contrast for cellular imaging due to the significant difference in soft x-ray attenuation lengths between organic materials, such as proteins and lipids (i.e., carbon), and water (i.e., oxygen). In addition to the high imaging contrast, the high penetration of soft x-rays eliminates the need for laborious sample preparation, including sectioning, chemical fixation, heavy-metal staining, and fluorescence labeling. The majority of soft x-ray microscopes are operated using synchrotron radiation sources, as they require x-ray sources with high spectral brightness, which limits accessibility. To complement these synchrotron-based instruments, we develop a laboratory-based soft x-ray microscope as alternative system for biological imaging. Motivated by this background, this thesis presents the development of laboratory soft x-ray microscopy focused on improving image resolution and optimizing sample preparation. The resolution has been improved to 25 nm(half-period) through vibration analysis and mitigation. Sample preparation optimization was achieved by controlling the ice thickness during devitrification process, applied to both manual plunge-freezing and automated systems, allowing for the preservation of cellular structures and improved image quality. These developments have enabled the establishment of methodology for investigating nanoparticle interactions in-vitro and in-vivo, relying solely on x-ray imaging. These advancements have enabled the investigation of uptake and dynamics of nanoparticles in organelles. Moreover, the applications extend beyond bio-nano interactions; they have also facilitated quantitative studies in viral infections of giant DNA viruses.

Mjukröntgenmikroskopi inom vattenfönstret är en kraftfull teknik för hög-upplöst biologisk avbildning tack vare dess förmåga att avbilda hela, intakta celler (ungefär 10 μm tjocka) i deras nära naturliga cellulära miljö. Den korta våglängden hos strålning i vattenfönstret (λ = 2.3–4.4 nm, E = 284–540 eV) som används i denna avbildningsteknik ger hög naturlig kontrast för cellulär avbildning, tack vare den betydande skillnaden i mjukröntgens absorptionslängd mellan organiska material, såsom proteiner och lipider (dvs. kol), och vatten (dvs. syre). Förutom den höga bildkontrasten eliminerar den höga penetrationen av mjukröntgen behovet av tidskrävande provberedning, inklusive sektionering, kemisk fixering, tungmetallfärgning och fluorescensmärkning. De flesta mjukröntgenmikroskop finns hos synkrotronstrålningskällor eftersom de kräver röntgenkällor med hög spektral ljusstyrka, vilket begränsar tillgängligheten. För att komplettera dessa synkrotronbaserade instrument utvecklar vi ett laboratoriebaserat mjukröntgenmikros-kop som ett alternativt system för biologisk avbildning. Motiverad av denna bakgrund presenterar denna avhandling utvecklingen av laboratoriebaserad mjukröntgenmikroskopi med fokus på att förbät-tra bildupplösningen och optimera provberedningen. Upplösningen har förbättrats till 25 nm (halvperiod) genom vibrationsanalys och dämpning. Optimering av provberedning uppnåddes genom att kontrollera istjockleken under vitrifieringsprocessen, tillämpad både vid manuell snabbfrysning och automatiserade system, vilket möjliggjorde bevarandet av cellstrukturer och förbättrad bildkvalitet. Dessa utvecklingar har möjliggjort etableringen av en metodik för att undersöka nanopartikelinteraktioner in vitro och in vivo, enbart med hjälp av röntgenavbildning. Framstegen har också möjliggjort undersökning av upptag och dynamik av nanopartiklar i organeller. Dessutom sträcker sig tillämpningarna bortom bio-nano-interaktioner; de har också underlättat kvantitativa studier av virusinfektioner med gigantisk DNA-virus.